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    • 2026春節(jié)放假通知
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      • 透射電鏡全套(包埋+制片+拍照)
      • 透射電鏡全套(包埋+制片+拍照)

      透射電鏡全套(包埋+制片+拍照)

      目錄價 ¥ 0.00 一鍵復制產(chǎn)品信息

      透射電鏡全套(包埋+制片+拍照),項目介紹透射電鏡(TEM)通過對組織細胞樣本進行樹脂包埋切片,60-80nm厚度的超薄切片,經(jīng)過重金屬鉛、鈾染色后于透射電子顯微鏡中進行幾千至幾萬倍的放大成像,從而能夠清楚的觀察到在普通光學顯微鏡下無法看清的動植物細胞內(nèi)的超微結構,比如線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體、溶酶體、自噬小體、凋亡小體、葉綠體、液泡、細胞內(nèi)細菌或病毒侵染等結構及病理變化。透射電鏡超薄切片除了能夠顯示細胞內(nèi)的超微結構之外,還可用于......
      文獻征集
      產(chǎn)品詳情

      項目介紹

      透射電鏡(TEM)通過對組織細胞樣本進行樹脂包埋切片,60-80nm厚度的超薄切片,經(jīng)過重金屬鉛、鈾染色后于透射電子顯微鏡中進行幾千至幾萬倍的放大成像,從而能夠清楚的觀察到在普通光學顯微鏡下無法看清的動植物細胞內(nèi)的超微結構,比如線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體、溶酶體、自噬小體、凋亡小體、葉綠體、液泡、細胞內(nèi)細菌或病毒侵染等結構及病理變化。透射電鏡超薄切片除了能夠顯示細胞內(nèi)的超微結構之外,還可用于觀察病原微生物,如各類細菌真菌等。目前已經(jīng)廣泛應用于細胞生物學、組織學、病毒學、病理學、分子生物學、材料科學等諸多研究領域,是觀察和研究物質(zhì)超微結構的強有力工具。


      透射電鏡平臺主要設備包括超薄切片機Leica EM UC7,透射電鏡HITACHI HT7700 80kv,透射電鏡HITACHI HT 7800 80kv。其中透射電鏡HITACHI HT7700、HITACHI HT7800主要技術指標如下:


      分辨率:1.0nm(加速電壓120kV,晶格像)

      放大倍數(shù):200~200,000 高反差模式

      4000~600,000 高倍模式

      50~1,000 低倍模式

      加速電壓:40-120KV


      實驗流程

      包埋-制片-拍照


      送樣運輸要求

      送樣時請下載詳細填寫附件中的送樣單并與樣品一起送達我司生物超微病理實驗室。


      1、動物組織樣本

      ① 1-3min內(nèi)取樣,取材前可提前準備裝有電鏡固定液的培養(yǎng)皿,將小組織塊離體取下后立即投入培養(yǎng)皿內(nèi),用手術刀在培養(yǎng)皿的固定液中進行切割成小塊,取樣組織體積控制在以下尺寸(1mm×1mm×1mm正方體、1mm×1mm×3mm長方體狀、1mm×2mm×3mm薄片狀)。固定液滲透能力有限,超出此范圍后組織會無法完全固定,后續(xù)實驗無法完成,務必請重視此過程

      ② 取材時盡量精確到需要觀察的目的部位(如觀察腎小球取腎皮質(zhì);觀察胰島取胰島豐富的胰尾;皮膚,腸胃等在固定液中易打卷的組織可將組織粘在濾紙上進行固定)。

      ③ 取材時一定注意避免鑷子擠壓等機械損傷,刀片要鋒利避免挫傷組織。

      ④ 組織取下后立即投入電鏡固定液內(nèi)室溫避光固定2h,再轉(zhuǎn)移至4°保存,4°冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結冰。4°時樣本可保存1個月左右


      2、植物組織樣本

      ① 取材要求同動物組織樣本。

      ② 組織投入固定液后需要進行真空抽氣讓組織沉底,如無條件抽氣可用濾紙將組織塞進固定液內(nèi),組織不能漂浮在固定液表面。(抽氣做出來的效果會好一些)


      3、細胞樣本

      貼壁細胞:(看細胞凋亡的,需要把培養(yǎng)液中的細胞也離心收集后固定)

      方法一:消化法(實驗目的不涉及觀察細胞膜相關的內(nèi)容如:觀察緊密連接

      ①培養(yǎng)好的細胞(細胞密度不超過70%)棄培養(yǎng)基,加入胰酶消化。

      ②胰酶消化好后(時間不宜過長),加培養(yǎng)基終止消化,吸管輕輕吹打至細胞起浮。吸入離心管,低速離心(不超過3000轉(zhuǎn)),3-5min左右,細胞團要有綠豆大小。

      ③棄上清,加入電鏡固定液(固定液需提前恢復至室溫),細胞團吹散重懸。

      ④室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)移至4°保存,4°冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結冰。

      方法二:刮取法

      ①培養(yǎng)好的細胞(細胞密度不超過70%)棄培養(yǎng)基,加入電鏡固定液(固定液需提前恢復至室溫)。

      ②常溫避光固定5min左右,用細胞刮(或軟橡膠蓋切得平整小方塊)沿一個方向輕輕刮下細胞,切記不要反復刮,避免細胞刮破。

      ③用巴氏吸管把細胞液吸入離心管內(nèi),放入離心機(不超過3000轉(zhuǎn)),低速離心3-5min左右,細胞團要有綠豆大小。

      ④棄固定液后加新的電鏡固定液,細胞團吹散重懸。

      ⑤室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)移至4°保存,4°冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結冰。

      懸浮細胞:離心收集細胞要肉眼可見細胞沉淀有綠豆大小,棄培養(yǎng)基后加電鏡固定液室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)移至4°保存,4°冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結冰。


      4、細菌樣本

      長于固體培養(yǎng)基的細菌:連帶著培養(yǎng)基一起挑下細菌放于電鏡固定液內(nèi)室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)移至4°保存,4°冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結冰。

      懸浮細菌孢子等:離心收集細菌要肉眼可見細菌沉淀綠豆大小,棄培養(yǎng)基后加電鏡固定液室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)移至4°保存,4°冰袋運輸,在保存和運輸過程中固定液切勿冷凍結冰。


      5、病毒

      破碎組織細胞,粗離心去除細胞碎片取上清,超速離心分離出病毒(病毒提取的過程需要客戶自己完成)。用緩沖液(如PBS)懸浮病毒,體積至少50ul,遠距離干冰凍存運輸,近距離4°保存運輸,盡快滴片做負染后及時電鏡觀察拍照。(噬菌體 4度運輸)


      6、外泌體囊泡等

      客戶自己完成外泌體囊泡等的提取收集,用緩沖液(如PBS)或者試劑盒中的保存液懸浮,,體積至少50ul,遠距離干冰凍存運輸,近距離4°保存運輸,盡快制片做負染后及時電鏡觀察拍照。(因此類樣品極易降解,樣品越新鮮越好,最好數(shù)小時內(nèi)完成滴片負染,否則做出的效果很不理想甚至完全觀察不到)


      7、納米材料等無機材料

      直接準備粉劑,或用純水或無水乙醇懸浮,常溫保存運輸即可(需要超聲的備注)。做負染后電鏡觀察拍照。

      常見問題
      問:細胞的運輸方式有哪些?有什么區(qū)別?

      答:公司提供兩種運輸方式供老師選擇,1、復蘇的活細胞:采用常溫發(fā)貨的方式,收到即可觀察密度并判斷是否進行傳代操作。優(yōu)勢是省去復蘇的步驟,細胞成活率較高。2、凍存的細胞:采用干冰運輸,一般情況下發(fā)貨是2支凍存管,收到后放-80過夜,第二天轉(zhuǎn)入液氮長期存儲,擇機復蘇。優(yōu)勢是發(fā)貨快,一般一兩天即可收到,缺點是需要自己復蘇。

      問:為什么你們的細胞和其他公司的細胞培養(yǎng)條件不一樣?

      答:我公司提供的細胞大部分都參考資源庫的培養(yǎng)信息,如ATCC、DSMZ、中科院等等官方平臺。也有少部分細胞為客戶提供了替代培養(yǎng)方案,根據(jù)客戶的意愿進行選擇!

      問:培養(yǎng)瓶的培養(yǎng)液可以重復使用嗎?

      答:不可以重復使用,一般從我公司發(fā)出的細胞都需要達到一定的密度后發(fā)出,充液的培養(yǎng)基血清比例會比正常培養(yǎng)時所用到的培養(yǎng)液低很多,通常在3-5%,以維持細胞存活,控制生長速度,不可以用來做細胞培養(yǎng)使用。

      問:培養(yǎng)細胞在鏡下觀察發(fā)現(xiàn)有一些白色的圓點是什么?

      答:細胞在鏡下發(fā)現(xiàn)圓形的白色的點點,一般情況下是為貼壁的細胞或脫落的細胞死亡后的產(chǎn)物,懸浮細胞也會有這種現(xiàn)象,出現(xiàn)圓形的光圈一樣的圓點。通常,白色的圓點是分散分布的,聚團類的懸浮細胞可能會聚團出現(xiàn)白色的亮斑,技術老師可以繼續(xù)培養(yǎng)并觀察。

      問:剛買回來的細胞如何凍存留種呢?

      答:一般情況下,我公司建議客戶收到細胞后傳1-2代后即可安排凍存留種,可先凍存1-2支凍存管,凍存的細胞數(shù)量多一些,便于后期復蘇。購買原代細胞的客戶,要充分考慮該細胞的傳代次數(shù)限制,人源原代細胞大概可以傳7代左右,鼠源的可以傳3代左右,對于一些能傳代次數(shù)很少的原代細胞,不建議凍存,收到后調(diào)整狀態(tài)后即可安排實驗。

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